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文獻解讀:DNA甲基化模式調控原始態(tài)到始發(fā)態(tài)多能性轉換和分化

瀏覽次數(shù):728 發(fā)布日期:2024-12-3  來源:本站 僅供參考,謝絕轉載,否則責任自負
TGF-β超家族包括TGFβ、Activin、Nodal、BMPs等,通過受體絲氨酸/蘇氨酸激酶傳遞信號,對細胞生長、分化、組織再生和癌變至關重要。Smad2和Smad3(Smad2/3)在TGFβ激活后被磷酸化,形成三聚體,可以與共同介質Smad4結合或不結合。Smad4與Smad2和Smad3(Smad2/3)結合形成轉錄調控復合體在典型的TGFβ信號通路中至關重要,但并非所有響應都必需,不依賴Smad4為共同介質的Smad2/3作用仍研究不足。因此研究Smad2/3在獨立于Smad4情況下如何調控mESCs譜系起始和分化,并探索這一過程中的分子機制尤為重要。
 
近日,上海交通大學基礎醫(yī)學院王瓊研究員、Yanhua Du和生命科學技術學院章永春團隊合作,共同探討了TGFβ-Smad信號通路和DNA甲基化在調控小鼠胚胎干細胞(mESCs)從原始態(tài)多能性(naïve  pluripotency)向始發(fā)態(tài)多能性(primed pluripotency)轉變以及隨后的分化過程中的作用。相關研究成果以“A stepwise mode of TGFβ-SMAD signaling and DNA methylation regulates naïve-to-primed pluripotency and differentiation”為題發(fā)表在Nature子刊《Nature Communications》上。

 


標題:A stepwise mode of TGFβ-SMAD signaling and DNA methylation regulates naïve-to-primed pluripotency and differentiation(TGFβ-SMAD信號通路和DNA甲基化模式調控原始態(tài)到始發(fā)態(tài)多能性轉換和分化)
期刊:Nature Communications
影響因子:IF 14.7
應用技術:RNA-seq、ChIP-seq、CUT&Tag、ATAC-seq(易基因金牌技術)

本研究引入了一個逐步模式,其中Smad2/3通過與不同效應因子合作來調控小鼠胚胎干細胞(mESCs)的譜系啟動和分化。在從原始態(tài)多能性向始發(fā)態(tài)多能性轉變的過程中,Smad2/3上調DNA甲基轉移酶3b(Dnmt3b),建立了適當?shù)腄NA甲基化模式,進而使Smad2/3能夠結合到外胚層標記基因的啟動子和增強子的低甲基化區(qū)域。因此,在Smad2/3缺失情況下,Smad4單獨不能啟動外胚層特異性基因轉錄。當始發(fā)態(tài)外胚層細胞開始分化時,Dnmt3b在全基因組甲基化中的活躍度降低,Smad4與Smad2/3形成復合物以支持中胚層和內胚層誘導。因此,缺乏Smad4的mESCs可以經(jīng)歷啟動過程,但在下游分化中遇到困難。本研究揭示了TGFβ信號及其在細胞過程中作用的復雜機制。
 
研究方法
  • 使用CRISPR/Cas9編輯技術生成Smad2/3和Smad4敲除(KO)小鼠胚胎干細胞系。
  • 通過RNA測序(RNA-seq)分析野生型(WT)、Smad2/3敲除(S2/3DKO)和Smad4敲除(S4KO)細胞的差異表達基因(DEGs),以及主成分分析(PCA)、基因本體(GO)分析、基因集變異分析(GSVA)。
  • 利用染色質免疫沉淀測序(ChIP-seq)和CUT&Tag技術研究Smad2/3和Dnmt3b的基因組結合位點。
  • ATAC-seq分析開放染色質區(qū)域,以了解染色質可及性。
  • WGBS和MeDIP分析ES和EpiLC階段WT和Dnmt3b敲除(3bKO)細胞的DNA甲基化水平。
  • 免疫共沉淀(IP)和質譜(MS)用于鑒定與Smad2/3互作的蛋白質,包括Dnmt3b。
  • Western blot檢測特定蛋白質的表達水平;免疫熒光檢測特定蛋白質在細胞內的表達和定位。
  • 體外蛋白質-蛋白質互作實驗:使用GST融合蛋白和His標簽融合蛋白進行體外拉下實驗,以研究蛋白質間的直接相互作用。
結果圖形
(1)S2/3DKO 和 S4KO的的差異轉錄組分析

 

圖1:mESC分化過程中Smad2/3和Smad4的差異需求。

 
A. 對野生型(WT)、Smad2/3雙敲除(S2/3DKO)和Smad4敲除(S4KO)細胞系中Smad2/3和Smad4蛋白的Western blot分析。Tubulin為對照。
B. 對WT、S2/3DKO和S4KO在mESC(第0天,D0)和胚胎體(EB)分化4天(D4)產(chǎn)生的RNA-seq數(shù)據(jù)進行主成分分析(PCA)。
C. WT、S2/3DKO或S4KO的D4 EBs的RNA-seq數(shù)據(jù)MA圖。與WT相比,在S2/3DKO或S4KO中上調(紅色)或下調(藍色)基因。每個條件分析兩個生物學重復樣本。
D. 分別以紅色和藍色條表示上調和下調的差異表達基因(DEGs)。
E.  在D0或D4 EBs中WT、S2/3DKO或S4KO的所有DEGs熱圖。
F. 左側點線圖顯示(E)中C2和C4的平均表達模式。右側顯示C2和C4中基因的GO分析。
G. 使用GSVA分析從D0到D4在WT、S2/3DKO和S4KO中的RNA-seq數(shù)據(jù)的譜系基因表達模式。ICM,內細胞團;PrE,原始內胚層;PreEpi,前外胚層;PostEpi,后外胚層;PS,原條;End,內胚層;Mes,中胚層;Ect,外胚層;VE,內臟內胚層。
H. 熱圖顯示W(wǎng)T、S2/3DKO和S4KO的mESC(D0)和D4 EBs中與外胚層相關的基因。
I. 熱圖顯示W(wǎng)T、S2/3DKO和S4KO的mESC(D0)和D4 EBs中的PS或中胚層基因。
J. WT、S2/3DKO和S4KO的mESC(D0)、EB D3和D4中的譜系標記基因表達qRT-PCR分析。
 
(2)在Smad4缺失情況下,外胚層(Epiblast)可以形成

 

圖2:Smad4缺失情況下的外胚層形成。

 
A. 圖表展示從mESC向EpiLC轉變過程(頂部)。mESCs在從2i+LIF培養(yǎng)基轉移到含有Activin A和bFGF的N2B27培養(yǎng)基中培養(yǎng)6天后,轉變?yōu)镋piLCs。實驗5次重復,展示W(wǎng)T、S4KO、S2/3DKO以及用Smad2/3拯救的S2/3DKO在轉變過程中細胞形態(tài)變化的代表性圖像(底部)。
B. 通過qRT-PCR分析誘導EpiLCs期間多能性基因(Nanog, Oct4)和著床后外胚層基因(Fgf5, Dnmt3a/3b, T)的mRNA水平。
C. 維恩圖顯示W(wǎng)T中Smad4 ChIP-seq、WT中Smad2/3 ChIP-seq和S4KO中Smad2/3 ChIP-seq之間的重疊峰值。注釋了與7926個峰值相鄰的基因,其中標記了始發(fā)態(tài)外胚層基因。
D. 熱圖顯示在AC處理的S4KO D3 EBs中,Smad2/3和Smad4的ChIP-seq標簽密度在11080個高置信度Smad2/3結合位點±1.5 kb基因組區(qū)域內。SB,SB431542,TGFβR的選擇性抑制劑;AC,Activin A,Nodal/Activin受體的可用配體。
E. Fgf5、Dnmt3a、Dnmt3b和T位點的基因軌跡視圖。在SB或AC處理的D3 EBs和未處理的D0 mESCs中進行Smad2/3和Smad4 ChIP-seq。底部示意性表示RefSeq基因結構。
 
(3)Dnmt3b與Smad2/3互作
圖3:Dnmt3b與Smad2/3互作。
 
A. Smad2/3共免疫沉淀和質譜(IP-MS)分析維恩圖。在WT和S4KO的D3 EBs中進行Smad2/3 IP-MS,包括未處理的、用SB或AC處理的樣本。在所有三個比較中(S4KO與WT、S4KO+AC與S4KO+SB、S4KO與S4KO+SB)鑒定出16種蛋白質,包括Dnmt3b。
B. 經(jīng)SB或AC添加處理后,通過使用Dnmt3b、pSmad2/3、Smad2/3和Smad4抗體的western blot實驗分析WT和S4KO D3 EBs中Smad2/3的免疫沉淀。
C. 在Smad2/3/4TKO細胞中,HA標記的Smad2/3(HA-S2/3)或/和Smad4(HA-S4)被過表達,進行靶向HA的免疫沉淀western blot分析。細胞在SB或AC處理后收集。
D. 在AC處理的WT和S4KO D3 EBs中,分析Smad2/3的染色質結合蛋白的免疫沉淀,使用了Dnmt3b、Smad2/3、Smad4和Otx2抗體的western blot分析。
E. 展示W(wǎng)T、S4KO和S2/3DKO D3 EBs的PLA實驗的代表性共聚焦圖像。
F. 在293T細胞中過表達HA標記的Smad2(HA-S2)或Smad3(HA-S3),或/和Flag標記的Dnmt3b(Flag-3b)。在進行抗Flag免疫沉淀后檢測Flag和HA的western blot。
G. 使用細菌表達的GST-Dnmt3b或GST-GFP,以及6x組氨酸標記的Smad2(His-S2,左)或Smad3(His-S3,右)進行GST拉下實驗。
H. 使用細菌表達的GST-Dnmt3b或GST,以及6x組氨酸標記的Smad2(His-S2,左)或Smad3(His-S3,右)進行His拉下實驗。
 
(4)Smad2/3上調Dnmt3b對外胚層形成至關重要

 
圖4:Smad2/3上調Dnmt3b對外胚層形成非常重要。
 
A. 對WT、S4KO、S2/3DKO和S2/3/4TKO細胞在EB分化(D0、D3和D4)期間的Dnmt3a、Dnmt3b、Eomes、Smad2/3和Smad4蛋白水平進行western blot分析。
B. mESC-EpiLC-ME兩步誘導方案(頂部)。將細胞轉移到含有Activin A和bFGF的N2B27培養(yǎng)基中培養(yǎng)6天后,EpiLCs進一步在加入CHIR99021的N2B27培養(yǎng)基中培養(yǎng)24小時以形成ME。western blot顯示W(wǎng)T、S4KO和S2/3DKO中Dnmt3a、Dnmt3b、Eomes、Smad4和Smad2/3的表達。
C. 對WT、S2/3DKO、S4KO以及帶有Dnmt3b shRNA 1或2的S4KO細胞的EB分化(D0、D3)和EpiLC誘導(D0、D4、D6)期間的始發(fā)態(tài)外胚層基因(Dnmt3b、Fgf5)和多能性基因Oct4進行qRT-PCR分析。
D. WT、S4KO和S2/3DKO EBs中5-mC(紅色)和DAPI(藍色)染色的代表性共聚焦顯微鏡圖像。
E. IGV視圖顯示W(wǎng)T和Dnmt3b敲除(3bKO)中Sox2位點在ES和EpiLC階段的WGBS信號譜。CpG島(紫色)和差異甲基化區(qū)域(DMRs)(紅色)也進行標記。在WT、S2/3DKO和S4KO的D3 EBs中進行Sox2 DMR1和DMR3的DNA甲基化水平的MeDIP-qPCR分析。
F. qRT-PCR檢測WT、S2/3DKO和S4KO細胞在EB分化前后(D0、D3、D4)的Sox2 mRNA水平。
 
(5)Dnmt3b獨立于Smad4介導Smad2/3與外胚層基因結合。

 

圖5:Dnmt3b獨立于Smad4介導Smad2/3與外胚層基因結合。

 
A. Fgf5基因位點的WGBS、ChIP-seq和CUT&Tag分析綜合視圖。WGBS以及H3K27ac、H3K4me1和H3K4me3的ChIP-seq在ESC或EpiLC階段進行,H3K36me3 ChIP-seq在小鼠E6.5外胚層進行。Smad2/3 ChIP-seq在WT和S4KO的EBs中進行(本研究),Dnmt3b CUT&Tag在WT、S4KO、WT+Dnmt3b-shRNA2(WT+3b-sh2)和S4KO+Dnmt3b-shRNA2(S4KO+3b-sh2)的EBs中進行,F(xiàn)lag CUT&Tag實驗在Dnmt3a-Flag或Dnmt3b-Flag細胞中進行;WT和S4KO EBs中Dnmt3a或Dnmt3b的ChIP-seq顯示在底部。
B 在Dnmt3b-Flag EBs中68204個Dnmt3b結合位點±1.5 kb基因組區(qū)域內Flag CUT&Tag的標簽密度熱圖,以及在WT或S4KO中32717或11080個Smad2/3結合位點中心的Smad2/3 ChIP-seq。
C. S4KO和S4KO+3b-sh2的EBs中Smad2/3 CUT&Tag的基因軌跡視圖,靶向Fgf5、Dnmt3a和Dnmt3b位點。
D. 在S4KO和S4KO+3bsh2周圍7926個Smad4獨立的Smad2/3峰值的Smad2/3 CUT&Tag信號熱圖。
E. Dnmt3b依賴的Smad2/3結合位點峰值得分圖。標記了與峰值相鄰的外胚層標記基因。
F. 對WT、S2/3KO、S4KO+Scr-shRNA、S4KO+3b-Sh1或S4KO+3b-sh2細胞系的D3 EBs中Fgf5啟動子(Fgf5_PP)、基因體(Fgf5_GB)和增強子(Fgf5_+30k、Fgf5_+40k和Fgf5_+56k)的Smad2/3和Dnmt3b結合進行ChIP-qPCR分析。使用抗IgG的ChIP作為陰性對照。

易小結
本研究通過RNA-seq、ChIP-seq、CUT&Tag、ATAC-seq、WGBS等分析揭示了Smad2/3在mESCs向EpiLCs轉變過程中通過誘導Dnmt3b表達來調控DNA甲基化模式,從而促進原始態(tài)多能性向始發(fā)態(tài)多能性的轉變。同時還揭示了在Smad2/3缺失情況下,Smad4單獨不能啟動Epiblast特異性基因轉錄。在分化過程中,Dnmt3b活性降低,Smad4與Smad2/3形成復合物,支持中胚層和內胚層的誘導。

總之,本研究闡明了TGFβ信號通路在細胞過程中的復雜機制,特別是Smad2/3和Smad4在mESCs的原始態(tài)多能性向始發(fā)態(tài)多能性轉變以及隨后分化中的作用,提出了一個逐步調控模型。
來源:深圳市易基因科技有限公司
聯(lián)系電話:0755-28317900
E-mail:wuhuanhuan@e-gene.cn

標簽: DNA甲基化
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